產品信息

產品名稱	產品編號	規格	價格（元）	促銷價格（元）
TUNEL Apoptosis Detection Kit (YSFluorTM 640) TUNEL細胞凋亡檢測試劑盒（YSFluorTM 640）	40308ES20	20 T	1250.00	1188.00
	40308ES50	50 T	3080.00	2928.00
	40308ES60	100 T	4800.00	4318.00

 

產品描述

細胞在發生凋亡時，會激活一些DNA內切酶，這些內切酶會切斷核小體間的基因組DNA。細胞凋亡時抽提DNA進行電泳檢測，可以發現180-200 bp的DNA ladder。 

TUNEL (TdT mediated dUTP Nick End Labeling) 細胞凋亡檢測試劑盒（YSFluor^TM 640）可以用來檢測組織細胞在凋亡晚期過程中細胞核DNA的斷裂情況。其原理是在末端脫氧核糖核苷酸轉移酶（Terminal Deoxynucleotidyl Transferase, TdT）的作用下，在基因組DNA斷裂時暴露出的3´-羥基（3´-OH）末端摻入YSFluor^TM 640-12-dUTP，從而可以用熒光顯微鏡或流式細胞儀檢測。YSFluor^TM 640為紅色熒光染料，具有很高的穩定性和很強的亮度。

本試劑盒應用范圍廣，可以用于檢測冷凍或石蠟切片中的細胞凋亡情況，也可以檢測培養的貼壁細胞或懸浮細胞的凋亡情況。

 

產品組分

編號	組分	產品編號/規格
		40308ES20（20 T）	40308ES50（50 T）	40308ES60（100 T）
40308-A	5×Equilibration Buffer	750 μL	1.25 mL×2	1.25 mL ×3
40308-B	YSFluorTM 640-12-dUTP Labeling Mix	100 μL	250 μL	250 μL×2
40308-C	Recombinant TdT Enzyme	20 μL	50 μL	50 μL×2
40308-D	Proteinase K(2 mg/mL)	40 μL	100 μL	100 μL×2
40308-E	DNase I (1 U/ μL)	5 μL	12 μL	25 μL
40308-F	10 × DNase I Buffer with MgCl2	100 μL	250 μL	500 μL

 

運輸與保存方法

冰袋（wet ice）運輸。

本試劑盒儲存在-20℃，YSFluor^TM 640-12-dUTP Labeling Mix避光儲存于-20℃，保質期為1年。

 

注意事項

1）需自備用于洗滌細胞的PBS，用于封片的抗熒光淬滅封片液，用于固定的4%多聚甲醛。

2）為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

3）本產品僅作科研用途！

 

操作步驟

一、樣品準備

A. 石蠟包埋組織切片

1）室溫下將石蠟組織切片放入二甲苯中浸泡5 min，重復一次，以徹底脫掉石蠟。

2）室溫下用100%乙醇浸泡切片5 min，重復一次。

3）室溫下用梯度乙醇（90、80、70%）各浸洗1次，每次3 min。

4）用PBS浸泡潤洗切片，并用濾紙小心吸干玻片上樣本周圍多余的液體。這時，可用石蠟筆或疏水筆在樣品周圍描繪樣品分布的輪廓，便于下游透性處理和平衡標記操作。在實驗過程中，切勿讓樣品干燥，處理好的樣本放在濕盒中保持濕潤。

5）按1:100的比例，用PBS稀釋2 mg/mL的Proteinase K溶液，使其終濃度為20 μg/mL。

6）每個樣本上滴加100 μL濃度為20 μg/mL的Proteinase K溶液，使其被全部覆蓋，室溫孵育20 min。【注】：Proteinase K幫助組織和細胞對后續步驟的染色試劑通透。孵育時間過長會增加組織切片在后續洗滌步驟中從載波片上脫落的風險，過短則可能造成透性處理不充分，影響標記效率。未得到更好的結果，可能需要優化Proteinase K孵育的時間。

7）用PBS溶液潤洗樣本2-3次，輕輕去掉多余液體，并用濾紙小心吸干載玻片上樣本周圍的液體。處理后的樣本放在濕盒中保持濕潤。

B. 組織冰凍切片

1）取出冰凍切片，并回溫至室溫。將玻片浸沒在4%多聚甲醛溶液（溶于PBS）中固定，室溫下孵育30 min。

2）輕輕去掉多余液體，并用濾紙小心吸干玻片上樣本周圍多余的液體。

3）將玻片浸沒在PBS溶液中，室溫孵育15 min，重復用PBS清洗1次，共2次。

4）輕輕去掉多余液體，并用濾紙小心吸干玻片上樣本周圍多余的液體。這時，可用石蠟筆或疏水筆在樣品周圍描繪樣品分布的輪廓，便于下游透性處理和平衡標記操作。在實驗過程中，切勿讓樣品干燥，處理好的樣本放在濕盒中保持濕潤。

5）按1:100的比例，用PBS作為稀釋液來稀釋2 mg/mL的Proteinase K溶液，使其終濃度為20 μg/mL。

6）每個樣本上滴加100 μL濃度為20 μg/mL的Proteinase K溶液，使其被全部覆蓋，室溫孵育10 min。【注】：Proteinase K幫助組織和細胞對后續步驟的染色試劑通透。孵育時間過長會增加組織切片在后續洗滌步驟中從載波片上脫落的風險，過短則可能造成透性處理不充分，影響標記效率。未得到更好的結果，可能需要優化Proteinase K孵育的時間。

7）于盛有PBS溶液的敞口燒杯中浸沒清洗樣本2-3次。

【注】：為了避免在清洗步驟中的樣本脫片損失，建議不用洗瓶清洗，而是將玻片浸在PBS溶液中2-3次進行清洗。

8）輕輕去掉多余液體，并用濾紙小心吸干載玻片上樣本周圍的液體。處理后的樣本放在濕盒中保持濕潤。

C. 細胞樣品

【細胞爬片的準備】：在Lab-Tek載波片小室（Chamber Slides）上培養貼壁細胞。在凋亡誘導處理之后，用PBS洗2遍載玻片。

【細胞涂片的制備（以多聚賴氨酸包被的載玻片為例）】

多聚賴氨酸包被的載玻片的準備：吸取50-100 μL 0.01%(w/v)多聚賴氨酸水溶液滴至每一片預清洗過的玻璃載玻片的表面。在將要用于固定細胞的區域將多聚賴氨酸溶液涂散為一薄層。待載玻片晾干之后，迅速用去離子水漂洗，然后讓包被后的載玻片在空氣中晾干30-60 min。包被后的載玻片能在室溫儲存數月。以約2×10⁷個細胞/mL的濃度將細胞重懸于PBS中，吸取50-100 μL細胞懸液滴于多聚賴氨酸包被的載玻片上，用一片干凈的載玻片輕柔的涂開細胞懸液。

按照以下步驟對細胞樣品進行處理：

1）固定細胞，將載玻片浸入裝有4%新鮮配制于PBS中的多聚甲醛的染色缸中，在4℃放置25 min。

2）洗滌載玻片，將其浸入PBS中，室溫放置5 min。重復用PBS洗一次。

3）輕輕去掉多余液體，并用濾紙小心吸干玻片上樣本周圍多余的液體。這時，可用石蠟筆或疏水筆在樣品周圍描繪樣品分布的輪廓，便于下游透性處理和平衡標記操作。在實驗過程中，切勿讓樣品干燥，處理好的樣本放在濕盒中保持濕潤。

4）按1:100的比例，用PBS作為稀釋液來稀釋2 mg/mL的Proteinase K溶液，使其終濃度為20 μg/mL。

5）每個樣本上滴加100 μL濃度為20 μg/mL的Proteinase K溶液，使其被全部覆蓋，室溫孵育5 min（也可浸于0.2%配制于PBS中的Triton X-100溶液中，室溫孵育5 min進行通透處理）。【注】：Proteinase K幫助組織和細胞對后續步驟的染色試劑通透。孵育時間過長會增加組織切片在后續洗滌步驟中從載波片上脫落的風險，過短則可能造成透性處理不充分，影響標記效率。未得到更好的結果，可能需要優化Proteinase K孵育的時間。

6）PBS潤洗樣本2-3次。輕輕去掉多余液體，并用濾紙小心吸干載玻片上樣本周圍的液體。處理后的樣本放在濕盒中。

二、DNA酶處理陽性對照的步驟

在樣本通透處理后，用DNA酶I處理細胞來準備陽性對照載玻片。該流程通常會引起被處理的大多數細胞顯現熒光。

【注】：DNA酶I處理固定的細胞會引起染色體DNA的斷裂，產生許多可標記的DNA 3’-末端。

1） 按1:10的比例用去離子水稀釋10×DNase I Buffer(每個樣本需用200 µL 1×DNase I Buffer，即需要用20 µL 10×DNase I Buffer和180 µL去離子水混合稀釋)，取其中100 µL滴加到已通透的樣本上，室溫孵育5min。向剩余100 μL 1×DNase I Buffer中加1 μL DNase I (1U/ μL)，使其終濃度為10 U/mL。

2）輕輕叩掉液體，加入100 μL含10U/mL DNase I 的緩沖液，室溫孵育10 min。

3）輕叩載玻片，去掉多余的液體，并將載玻片在裝有去離子水的染色缸中徹底洗3-4次。

【注】：陽性對照載玻片必須使用單獨的染色缸，否則陽性對照載玻片上殘余的DNase I 可能會在實驗載玻片上引入高背景。

三、標記與檢測

1）按1:5的比例用去離子水稀釋5×Equilibration Buffer（每個樣品需要100 μL 1×Equilibration Buffer）。

2）每個樣本滴加100 μL 1×Equilibration Buffer使其全部覆蓋待檢樣本區域，室溫孵育10-30 min。或者將載玻片放入一個含1×Equilibration Buffer的缸中，保證緩沖液沒過樣本。在平衡細胞的同時在冰上解凍YSFluor^TM 640-12-dUTP Labeling Mix，

并且依照表1，準備足夠量的用于所有實驗的和可選陽性對照反應的TdT孵育緩沖液。對于面積小于5 cm²的一個標準反應，其體積是50 μL，用50 μL乘以實驗和陽性對照反應的數目來確定所需TdT孵育緩沖液的總體積。對于表面積更大的樣本，可成比例的增大試劑體積。

表1.準備用于實驗的和可選陽性對照反應的TdT孵育緩沖液

組分	體積（ μL/50 μL體系）
ddH2O	34
5×Equilibration Buffer	10
YSFluorTM 640-12-dUTP Labeling Mix	5
Recombinant TdT Enzyme	1

陰性對照體系：準備一份不含TdT酶的對照孵育緩沖液，用ddH₂O替代TdT酶。

3）在平衡后的區域周圍用吸水紙洗掉100 μL 1×Equilibration Buffer中的大部分，然后在5cm²面積的細胞上加入50 μL TdT孵育緩沖液。不要讓細胞干掉。這之后的操作，載玻片要避光。

4）把塑料蓋玻片（或封口膜）蓋在細胞上以保證試劑的平均分布，在濕盒的底部放上用水浸濕的紙巾。將載玻片置于濕盒內，在37℃孵育60 min。將濕盒用鋁箔紙包裹以避光。

【注】：塑料蓋玻片在使用前可以切成兩半。折起蓋玻片的邊緣以便于移除和操作。

5）移除塑料蓋玻片（或封口膜），并將切片置于PBS溶液中室溫孵育5 min，換用新鮮PBS重復2次。

6） 用濾紙輕輕擦掉樣本周圍及背面的PBS溶液。【注】：為了降低背景，載玻片在用PBS洗一遍后，可再用含0.1% Triton X-100和5 mg/mL BSA的PBS洗3次，每次5 min，這樣游離的未反應的標記物可以清除較干凈。

7）樣本在染色缸中染色，在黑暗中將載玻片浸入裝有DAPI溶液的染色缸，室溫放置5 min。DAPI溶液用PBS新鮮配制并稀釋到2 μg/mL。

8）洗滌樣本，將載玻片浸入去離子水中，室溫放置5min。重復兩次，總共洗三次。

9）擦干載玻片上多余的水并向樣品區域加100 μL PBS保持樣品濕潤。

10）立即在熒光顯微鏡下分析樣本，在620 nm下檢測YSFluor^TM 640紅色熒光，在460 nm觀察藍色的DAPI。DAPI能將凋亡和未凋亡的細胞都染成藍色，只在凋亡的細胞核中才有YSFluor^TM 640-12-dUTP摻入而定位的紅色熒光。如有必要，載玻片能在4℃黑暗條件下存放過夜。

四、利用流式細胞術檢測懸浮細胞

1）將3-5×10⁶個細胞用PBS洗兩次，每次在4℃，300×g離心10 min，然后重懸在0.5 mL PBS中。

2）固定細胞，加入5 mL 1%配制于PBS中的多聚甲醛溶液，冰上放置20 min。

3）細胞在4℃，300×g離心10 min，去上清并且重懸于5 mLPBS。重復洗一次，并用0.5 mLPBS重懸細胞。

4）通透細胞，加入5 mL冰上預冷的70%乙醇，在-20℃孵育4小時。細胞能在70%乙醇中-20℃條件下保存一周，或者，細胞可用配制于PBS中的0.2% Triton X-100溶液通透，室溫放置5 min。

5）細胞在300×g離心10 min，并用5 mL PBS重懸。重復離心，并于1 mL PBS重懸。

6）轉移2×10⁶個細胞至一個1.5 mL的微量離心管。

7）300×g離心10 min，去上清，并用80 μL 1×Equilibration Buffer重懸。室溫孵育5 min。

8）在平衡細胞的同時，在冰上融解YSFluor^TM 640-12-dUTP Labeling Mix，并且依照表1，準備足夠量的用于所有反應的TdT孵育緩沖液。對于2×10⁶個細胞的一個標準反應，其體積是50 μL，用50 μL乘上反應數目來確定所需TdT孵育緩沖液的總體積。

9）細胞在300×g離心10min，去上清并把沉淀重懸在50 μL TdT孵育緩沖液中，37℃孵育60 min，避光。每隔15 min用微量移液器輕輕重懸細胞。

10）加入1 mL 20 mM EDTA終止反應，用微量移液器輕柔混勻。

11）300×g離心10 min，去上清并把沉淀重懸在1 mL配制于PBS中的0.1% Triton X-100溶液，其中含5 mg/mL BSA，重復一次，總共洗2次。

12）用流式細胞儀分析細胞，測量620 nm的YSFluor^TM 640紅色熒光。

HB240313