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2025-01-10 10:50:07流體科學教學實驗設備
流體科學教學實驗設備是用于流體力學教學與研究的實驗裝置,涵蓋基礎流體力學、流體力學實驗技術等多個方面。這些設備通常包括管道流動實驗裝置、層流與湍流演示裝置、伯努利方程實驗裝置等,能夠直觀地展示流體在不同條件下的流動特性、壓力分布、流速變化等。通過這些實驗設備,學生可以深入理解流體力學的基本原理,提升實驗操作技能,為科學研究與工程應用打下堅實基礎。

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2025-04-14 18:15:18自動進樣器是實驗設備嗎?
自動進樣器是實驗設備嗎? 自動進樣器作為現代實驗室中不可或缺的一部分,廣泛應用于化學、醫學、環境監測等領域。隨著科學研究的進步,自動化設備逐漸成為提高實驗效率、準確性和重復性的重要工具。自動進樣器到底是否可以被視作實驗設備?本文將深入分析其功能、應用場景以及對實驗的貢獻,以幫助讀者更好地理解自動進樣器在實驗室中的重要作用。 自動進樣器的基本定義 自動進樣器,顧名思義,是一種用于自動化進樣的設備。其主要功能是將樣品精確地送入分析儀器中進行檢測。與傳統的手動進樣方式不同,自動進樣器能夠在不干擾實驗流程的情況下,自動完成樣品的取樣、傳輸和注入等過程。此種設備的優勢在于提高了樣品處理的速度和準確性,并減少了人為誤差的發生。 自動進樣器的工作原理 自動進樣器通常由樣品存儲區、進樣針、控制系統等主要部分構成。樣品通過專門的儲存裝置放置在進樣器的樣品池中,設備內部的進樣針會根據預設的程序,在指定的時間和順序內從樣品池中抽取樣品并注入分析儀器。這一過程可以根據實驗要求進行編程調節,確保每個樣品的注入量精確一致。 自動進樣器在實驗中的應用 自動進樣器在眾多領域的實驗中有著廣泛應用。以化學分析為例,許多化學實驗要求將不同的化學樣品精確送入氣相色譜儀或液相色譜儀中進行定量分析。此時,自動進樣器不僅提高了實驗的自動化水平,而且確保了樣品的輸入,使得實驗結果更加可靠。 在環境監測領域,自動進樣器同樣扮演著重要角色。例如,在水質分析中,自動進樣器可定時定量地抽取水樣,確保每個水樣的分析結果具有可比性與一致性。在醫學實驗中,自動進樣器用于血液、尿液等生物樣本的處理,可以減少實驗人員的工作量,提高數據的處理效率。 自動進樣器的優勢 自動進樣器的優勢顯而易見。自動化程度高,減少了人工操作的步驟,使實驗過程更加標準化。自動進樣器能夠提高樣品的分析速度,特別是在需要大量樣品分析的實驗中,其優勢更加突出。自動進樣器能有效避免人為錯誤,比如注樣不準確或取樣時污染等問題,從而提升實驗結果的可靠性。 另一個重要的優勢是自動進樣器能顯著減少實驗人員的勞動強度,尤其是在高通量的實驗中,自動進樣器能夠全程無干預地完成復雜的取樣過程,大大解放了實驗人員的雙手,優化了實驗室資源配置。 結論 自動進樣器作為現代實驗室中不可或缺的設備之一,無論在化學、醫學、環境監測等領域,都發揮著至關重要的作用。它通過高效、精確的自動化功能,不僅提高了實驗的速度與準確性,還有效減少了人為操作失誤,是各類實驗中的一項核心設備。因此,自動進樣器毫無疑問可以被視為實驗設備,并且它的不斷發展與優化將推動更多領域的技術進步。
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2025-04-11 17:00:13自動進樣器是實驗設備嗎?
自動進樣器是實驗設備嗎? 自動進樣器作為現代實驗室中不可或缺的一部分,廣泛應用于化學、醫學、環境監測等領域。隨著科學研究的進步,自動化設備逐漸成為提高實驗效率、準確性和重復性的重要工具。自動進樣器到底是否可以被視作實驗設備?本文將深入分析其功能、應用場景以及對實驗的貢獻,以幫助讀者更好地理解自動進樣器在實驗室中的重要作用。 自動進樣器的基本定義 自動進樣器,顧名思義,是一種用于自動化進樣的設備。其主要功能是將樣品精確地送入分析儀器中進行檢測。與傳統的手動進樣方式不同,自動進樣器能夠在不干擾實驗流程的情況下,自動完成樣品的取樣、傳輸和注入等過程。此種設備的優勢在于提高了樣品處理的速度和準確性,并減少了人為誤差的發生。 自動進樣器的工作原理 自動進樣器通常由樣品存儲區、進樣針、控制系統等主要部分構成。樣品通過專門的儲存裝置放置在進樣器的樣品池中,設備內部的進樣針會根據預設的程序,在指定的時間和順序內從樣品池中抽取樣品并注入分析儀器。這一過程可以根據實驗要求進行編程調節,確保每個樣品的注入量精確一致。 自動進樣器在實驗中的應用 自動進樣器在眾多領域的實驗中有著廣泛應用。以化學分析為例,許多化學實驗要求將不同的化學樣品精確送入氣相色譜儀或液相色譜儀中進行定量分析。此時,自動進樣器不僅提高了實驗的自動化水平,而且確保了樣品的輸入,使得實驗結果更加可靠。 在環境監測領域,自動進樣器同樣扮演著重要角色。例如,在水質分析中,自動進樣器可定時定量地抽取水樣,確保每個水樣的分析結果具有可比性與一致性。在醫學實驗中,自動進樣器用于血液、尿液等生物樣本的處理,可以減少實驗人員的工作量,提高數據的處理效率。 自動進樣器的優勢 自動進樣器的優勢顯而易見。自動化程度高,減少了人工操作的步驟,使實驗過程更加標準化。自動進樣器能夠提高樣品的分析速度,特別是在需要大量樣品分析的實驗中,其優勢更加突出。自動進樣器能有效避免人為錯誤,比如注樣不準確或取樣時污染等問題,從而提升實驗結果的可靠性。 另一個重要的優勢是自動進樣器能顯著減少實驗人員的勞動強度,尤其是在高通量的實驗中,自動進樣器能夠全程無干預地完成復雜的取樣過程,大大解放了實驗人員的雙手,優化了實驗室資源配置。 結論 自動進樣器作為現代實驗室中不可或缺的設備之一,無論在化學、醫學、環境監測等領域,都發揮著至關重要的作用。它通過高效、精確的自動化功能,不僅提高了實驗的速度與準確性,還有效減少了人為操作失誤,是各類實驗中的一項核心設備。因此,自動進樣器毫無疑問可以被視為實驗設備,并且它的不斷發展與優化將推動更多領域的技術進步。
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2023-07-03 11:44:39nmr核磁共振儀實驗用設備
nmr核磁共振儀(Nuclear Magnetic Resonance Spectrometer,NMR Spectrometer)是一種用于進行核磁共振實驗用的科學儀器。它通過應用強磁場和射頻脈沖,對物質中的核自旋進行激發和檢測,從而獲取樣品的核磁共振譜圖。nmr核磁共振儀實驗用通常由以下主要組件組成:1.磁體(Magnet):磁體是核磁共振儀的核心部件,產生強大的恒定磁場。高場核磁共振儀通常使用超導磁體,而低場核磁共振儀可能使用永磁體或傳統磁體。2.射頻系統(RF System):射頻系統產生射頻脈沖,并將其傳輸到樣品中,用于激發和探測樣品中的核自旋。它包括射頻發生器、射頻放大器、射頻探頭等。3.梯度線圈(Gradient Coils):梯度線圈用于在空間中創建非均勻磁場,從而實現空間定位和成像功能。梯度線圈通常是用于核磁共振成像(MRI)的核磁共振儀的關鍵組件。4.控制系統(Control System):控制系統用于控制和操作核磁共振儀的各個組件,包括磁場控制、射頻脈沖控制、數據采集和處理等。5.計算機系統(Computer System):計算機系統用于數據采集、處理和分析,以及儀器控制和實驗參數設置。它通常與核磁共振儀的控制系統緊密集成。nmr核磁共振技術的優點是具有高靈敏度、無需對樣品進行處理、可檢測水油含量等,因此在食品、農業、生命科學等領域得到了廣泛的應用。不同類型的核磁共振儀具有不同的規格和功能,可根據實驗需求和研究領域選擇適合的儀器。
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2022-06-29 15:59:20ibidi實驗方案|在流體環境下細胞培養進行粘附實驗
  該應用描述了一種在流動下的粘附試驗,該試驗旨在研究特定細胞表面分子的作用,以確定它們在細胞附著和粘附到其他細胞類型期間的潛在相互作用。   對于我們的方法,我們使用預染色的鼠腫瘤細胞(多發性骨s瘤:MM)和鼠內皮細胞(EC),然后使用單克隆抗體阻斷我們感興趣的分子之一。簡而言之,將EC接種到ibidi通道μ-SlidesI0.6mmLuer中,并在恒流下培養24小時。為了開始共培養,將標記的MM細胞添加到流動容器中并繼續流動。24小時后,用抗體(以阻斷感興趣的分子)或相應的同種型對照處理裝置,并保持流動24小時。第二天,將μ-Slides與流體單元(FU)斷開并清洗以去除非粘附的MM細胞。為了分析標記的MM細胞對EC的粘附,使用共聚焦顯微鏡獲得了μ-Slides的熒光圖像。   1. 材料和試劑   ?MOPC多發性骨s瘤(MM)細胞系(ATCC,TIB-23?)   ?EOMA內皮細胞(EC)系(ATCC,CRL-2586?)   ?含10%FCS的RPMI培養基(FisherScientific,11530586)   ?內皮細胞生長培養基(EC培養基、CellBiologics、M1168)   ?PBS(泛生物技術,P04-361000)   ?非酶細胞解離溶液(Sigma-Aldrich,C5914-100ML)   ?臺盼藍溶液(Sigma-Aldrich,93595)   ?CellTracker?綠色CMFDA染料(ThermoFisher,C7025)   2. 設備和設置    ?帶有2個流體單元(FU)的ibidi泵系統,每個單元都帶有用于2ml儲液罐的支架(ibidi,10977)   ?ibidiμ-SlideI0.6mmLuer,ibiTreat(ibidi,80186)   ?ibidiPerfusionSet藍色,15厘米,內徑0.8毫米(ibidi,10961)   ?ibidi過濾器/儲液罐套裝,2毫升(ibidi,10972)   ?帶細胞培養設備的層流罩   ?培養箱(所有培養步驟均在37°C和5%CO2下進行)   ?帶有適當濾光片組和照相機的熒光顯微鏡   ?粘度:0.0072(dynxs)/cm2   3.實驗流程   1.準備EOMA細胞稀釋液:根據制造商的說明,使用非酶細胞解離溶液分離先前培養的EOMA細胞。使用血細胞計數器(Neubauerchamber)對細胞進行計數。在EC培養基中將細胞稀釋至1.2x106個細胞/ml的濃度。   2.種入EOMA細胞:在3個 μ-SlidesI0.6mmLuer(ibidi,80186)中加入150μlEOMA細胞稀釋液(每個μ-Slide1.75x105EOMA細胞),然后孵育3小時。  表1:實驗設置   3.啟動流量:播種三小時后,將2個μ-Slides連接到流體單元FU,使用總量2.7毫升EC培養基。在8.2mbar的壓力下將EOMA細胞表面的剪切應力設置為0.5dyn/cm2。測量流速并使用兩個FU的平均值來計算校準因子。提前孵育FU和連接的載玻片過夜。第三個帶有EOMA細胞的μ-Slide用作靜態控制。在沒有任何流動的情況下孵育它過夜。   4.準備MM細胞:根據制造商的方案,用CellTrackerGreen(CMFDA)染料在600μlRPMI培養基(不含FCS)中染色6x105MM細胞。標記后,離心細胞并使用血細胞計數器對其進行計數。   5.開始與MM細胞共培養:停止流動并在無菌條件下從FU水庫中取出EC培養基。要開始共培養,將RPMI培養基(含10%FCS)和EC培養基以1:1的比例混合,并填充該混合物總體積為2.5ml,其中含有1.5x105MM注入兩個FU儲液罐。將FU重新連接到泵系統并繼續流動24小時。   6.分子阻斷:將MM細胞添加到ECs后24小時,用100μg/ml抗體(載玻片 #2)或相應的同種型對照(載玻片 #1)處理細胞,將它們直接添加到FU,無需更換介質。將孵育保持在流動狀態下24小時。   7.清洗和成像:從FU上斷開μ-Slides。用PBS清洗細胞一次,以去除任何非貼壁細胞。使用共聚焦顯微鏡獲取熒光圖像,以可視化附著在EC層上的標記MM細胞。  圖1:與同種型對照處理(左圖)相比,阻斷特定表面分子(右圖)時,MM細胞對ECs的粘附性降低
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