臍帶間充質干細胞（Mesenchymal Stem Cells，MSCs）是指存在于新生兒臍帶組織中的一種多功能干細胞。臍帶間充質干細胞具有較高的分化潛能，可向多個方向進行分化。它在骨、軟骨、肌肉、肌腱、韌帶、神經、肝、內皮和心肌等組織工程方面具有廣闊的臨床應用前景。有報道從人臍帶中分離出MSCs，且細胞含量、增殖能力優于MSCs，免疫原性比MSCs低  ，并且具有取材方便，無倫理學爭議等優點，因此越來越受到研究工作者們的關注。

近期有位客戶需要一臺顯微鏡用于觀察臍帶間充質干細胞，由于它是需要培養皿培養的，因此銷售經理推薦細胞工廠顯微鏡MI52-CF。

 
顯微鏡MI52-CF觀察臍帶間充質干細胞

細胞工廠MI52-CF采用優良的無限遠光學系統，可實現明視場、相襯觀察。可對高培養皿或圓筒狀燒瓶進行無沾染培養細胞觀察。或對細胞組織，透明液態組織的顯微觀察，可對培養皿中的培養組織進行動態顯微觀察，也可對“細胞工廠”進行顯微觀察。可應用于科研院所、高等院校、醫療衛生、生物醫藥、檢驗檢疫、農牧乳業等部門。

除此之外，熒光顯微鏡也可應用于人臍帶間充質干細胞主庫支原體

熒光生物顯微鏡MF31-M采用無限遠平場消色差物鏡和大視野目鏡，可用雙目或三目觀察，搭配LED熒光激發裝置，實現明場和熒光顯微觀察，供臨床試驗室利用顯微放大原理觀察微小細胞、組織等樣本用。

如果您對臍帶間充質干細胞顯微鏡感興趣或有疑問，歡迎與我們聯系，期待與您相約！

來源：http://www.mshot.com.cn/kehuanli/202303313.html，轉載請保留出處，謝謝！

基因工程細胞的同質性對于很多應用都是必要條件，例如細胞株開發、基因ZL、組織工程以及細胞ZL與再生醫學。CRISPR/Cas9基因編輯存在脫靶等情況，無法直接得到均質的細胞，因此需要開展單細胞克隆，之后才能用于臨床。

CloneSelect單細胞分離系統（CloneSelect Single Cell Printer）采用類似噴墨打印的技術，柔和地產生包裹細胞的液滴無接觸地直接分配到微孔板中（圖1）。同時，該系統借助智能圖像分析，確認細胞數目，分析細胞的形態（大小和圓度）及熒光強度，聯動的真空裝置將不符合要求的液滴（如空液滴或者含多個細胞的液滴）直接吸走，而符合要求的細胞液滴則分配至微孔板，從而實現對單個細胞的分選和接種。單細胞分離系統是一種可比移液器操作的柔和的單細胞分離技術，而流式分選由于高的液體剪切力和電壓的影響，會降低敏感細胞和部分受損細胞（如電轉后的細胞）的成克隆率，因此單細胞分離系統更適用于基因工程細胞的克隆，維持細胞活力，并提供直接的單克隆性圖像證據。

圖1：CloneSelect f.sight單細胞分離系統

最近發表的一篇文章（Characterization of CRISPR/Cas9 RANKL knockout mesenchymal stem cell clones based on single-cell printing technology and emulsion coupling assay as a low-cellularity workflow for single-cell cloning），作者用CRISPR/Cas9對間充質干細胞（MSC）開展RANKL基因敲除以提高其骨骼形成能力。整個實驗流程起始于轉染，接著用CloneSelect f.sight單細胞分離系統開展單細胞克隆，隨后在DNA、RNA以及蛋白質水平開展分析，ZH開展細胞功能分析（圖2）。

圖2：基因編輯間充質干細胞的單細胞克隆及分析流程。（圖片來源：文獻1）。

作者在CRISPR/Cas9基因敲除質粒中加入了GFP基因，轉染間充質干細胞后，用具備熒光分選功能的CloneSelect f.sight系統分選出轉染成功的單細胞。系統可設定細胞直徑、圓度和熒光強度等指標，分選出單個活細胞并接種至微孔板。圖3為系統分選基因編輯的間充質干細胞的5張連續的圖像。通過瀏覽單細胞分離過程中記錄的5張連續的圖像，作者統計單細胞接種的成功率為93.9±2.7%（n=451），即僅有~6%的孔為多細胞孔，或空孔或無法確認（圖4）。這一結果表明f.sight單細胞分離系統可以準確地識別細胞并成功將其接種至微孔內。

圖3：CloneSelect f.sight系統分選間充質干細胞時采集的5張連續圖像，可用于證明單克隆性。（圖片來源：文獻¹）。

除了帶GFP的基因敲除質粒外，作者還將pmaxGFP質粒轉染至間充質干細胞作為對照用于評估單細胞分離效率和克隆率。此外，作者轉染了多個不同的基因敲除質粒。雖然不同的質粒因為大小不同而呈現各異的轉染效率，但是成克隆率都達到了30%。此外，作者還發現轉染質粒的間充質干細胞（31.3±8%）和未轉染的間充質干細胞（39.6±15.6%）在成克隆率上差異較小，這也表明f.sight的單細胞分選過程柔和，因此產生的系統偏差較小（圖4）。

圖4：CloneSelect f.sight單細胞分離系統的高接種效率（左）和高成克隆率（右）。（圖片來源：文獻¹）。

接著作者采用surveyor assay、RT-PCR和emulsion coupling分別從DNA、RNA和蛋白質水平對基因編輯后的間充質單細胞開展分析。ZH作者選出一株雙等位基因敲除的間充質干細胞（g23d）檢測其成骨分化的能力，并以未編輯的MSC為對照開展平行實驗。細胞轉移到成骨分化培養基后，分別在第7天、14天和21天用茜素紅染色。在第14天，細胞失去細長的成纖維細胞樣形態，開始呈現出成骨細胞樣的形態，然后在第21天開始出現鈣沉積，發展過程與親本的MSC對照類似（圖5）。這表明基因編輯后的MSC其成骨分化能力并沒有因為基因編輯和篩選過程而受到影響。

圖5：RANKL基因敲除的間充質干細胞（g23d）和親本間充質干細胞的培養和成骨分化。（圖片來源：文獻1）。

在這個研究中，作者搭建了一整套實驗流程，起始于CRISPR/Cas9基因編輯，單細胞克隆以及DNA、RNA和蛋白質各個水平的分析和細胞功能測試。實驗流程中采用CloneSelect f.sight單細胞分離系統成功GX地分選出基因編輯后帶GFP的間充質干細胞。單細胞接種效率高達93.9% (± 2.7%)，且成克隆率高達31.3% (±8%)。相比傳統的有限稀釋法和流式分選，CloneSelect單細胞分離系統具有GX率，高活率，操作簡單，單克隆性證據充分等優勢，是基因工程細胞克隆的理想工具。

殘余變形是材料在經歷外部應力作用后，卸載時無法完全恢復的變形量。它通常是材料內部微觀結構不可逆變化的結果，廣泛出現在材料科學、機械工程、結構設計等領域。為了準確測量這種變形，使用引伸計（又稱為應變計）是一種常見且有效的方式。但是，殘余變形是否必須使用引伸計測量，還是可以采用其他手段？本文將深入探討這一問題，并分析各種方法的適用場景和優缺點。

殘余變形的測量原理

殘余變形的測量對于材料性能的研究至關重要，它可以幫助工程師和科學家評估材料在極限應力下的表現，預測疲勞壽命及安全系數。傳統上，引伸計被廣泛應用于此類測量中。引伸計通過測量材料在加載與卸載過程中的應變，能夠精確記錄變形量，尤其適合微小應變的測量。在許多實驗中，引伸計的高精度和較好的穩定性使其成為測量殘余變形的工具。

引伸計并非測量殘余變形的手段。隨著科學技術的進步，其他測量方法也開始廣泛應用于工程實踐中。例如，激光干涉測量、光學方法、甚至數字圖像相關（DIC）技術等都可以用于監測材料的應力和變形行為。

不使用引伸計的替代測量方法

1. 數字圖像相關（DIC）技術：數字圖像相關技術是一種基于圖像處理的測量方法，能夠通過對比不同時間段的材料表面圖像，計算出材料的變形信息。DIC方法具有非接觸、全場測量的優點，能夠提供材料在整個受力過程中任意區域的應變分布。這種方法對殘余變形的測量尤其適合不規則或復雜形狀的物體。在某些情況下，DIC技術甚至能夠替代引伸計，特別是在難以安裝應變計或無法接觸的表面上。
2. 光學應變測量技術：光學應變測量通常使用光纖傳感器或表面紋理分析技術。這種方法與引伸計相比，同樣具有非接觸測量的優點，能夠在較大范圍內監控材料變形，同時保持高精度。這種方法常見于橋梁、建筑物等大規模結構的應變監測。對于殘余變形的測量，它也具有一定的優勢，特別是在應對長期監測任務時，光纖傳感器由于抗干擾能力強、耐久性高，成為引伸計的有力替代方案。

不同測量方法的優缺點分析

每種測量方法都有其獨特的適用場景。引伸計由于其安裝便捷、操作簡單、成本較低等特點，仍然是多數實驗室和現場工程中使用的主流工具。激光干涉、DIC和光學測量等替代方法在特定條件下（如非接觸要求、復雜形狀、超高精度需求等）具備優勢。相比之下，非接觸測量技術往往更適合對大面積、復雜幾何形狀的材料進行全場應變測量。